자연에서 식용균은 단독으로 존재하지 않고, 많은 세균, 방선균, 곰팡이 등과 함께 살아갑니다. 이러한 식용균류에 서식하는 잡균을 분리하고, 배양을 통해 순수하고 우수한 균주를 얻는 것을 소위 세균주 분리라고 합니다. 박테리아 분모종, 원종, 재배종. \x0d\(1) 모종의 분리 및 배양 \x0d\\x0d\식용균의 모종의 분리는 포자분리법, 조직분리법, 기저내 균사분리로 나눌 수 있다. \x0d\1. 포자분리법 \x0d\포자분리법은 식용균의 유성포자 또는 무성포자를 이용하여 균사로 발아시켜 균주로 배양하는 방법이다. 이 균주는 생명력이 강하나 포자개체에 차이가 있고, 자연분화현상이 심하고 변이도 크기 때문에 생산에 사용하기 위해서는 버섯시험이 필요하다. \x0d\ (l) 단일 포자 분리 방법: 이 방법은 한 번에 하나의 담자포자를 채취하거나 각 시험관에서 채취하여 균사체로 발아시켜 순수한 균주를 얻는 방법입니다. 버섯과 밀짚버섯의 단포자로부터 분리한 균사체는 열매를 생산하는 능력을 갖고 있으며, 이 방법을 이용하면 순수한 균주를 분리, 생산할 수 있다. 단일 포자 분리는 생산에 거의 사용되지 않으며 기술이 복잡하여 일반적으로 다중 포자 분리가 사용됩니다. \x0d\ (2) 다포자 분리법: 동일한 배양배지에 많은 포자를 접종하여 자유롭게 발아 및 교배시켜 순수한 식용균주를 얻는 방법이다. 구체적인 조작 방법은 다음과 같습니다. \x0d\① 버섯 포자 배출 방법: 개체가 강하고, 꽃 모양이 둥글고, 해충 및 질병이 없으며, 열매가 균일하고, 수확량이 높고 안정적이며, 적응력이 강한 89% 성숙된 버섯을 선택합니다. 줄기의 대부분을 잘라낸 후 멸균수로 여러 번 헹군 후 멸균된 거즈나 흡수성 솜이나 여과지를 사용하여 표면의 수분을 흡수시킵니다. 접종 상자나 무균실에서 유리 깔대기 아래에 버섯의 아가미를 철사로 거꾸로 매달고 페트리 접시 위에 깔때기를 거꾸로 덮고 상단의 작은 구멍을 솜으로 막습니다. 페트리 접시를 거즈로 덮은 에나멜 접시 위에 놓고 12~20시간 동안 그대로 놓아두면 아가미에 있는 포자가 페트리 접시에 흩어집니다. 가루형태의 포자무늬층이 형성된다(느타리버섯은 매우 연한 보라색, 새송이버섯과 밀짚버섯은 갈색, 표고버섯과 팽이버섯은 흰색 포자무늬가 있음). 접종바늘을 사용하여 소량의 포자를 채취한 후 시험관이나 페트리 접시의 한천 외부에 줄무늬로 접종합니다. 포자가 발아하여 콜로니가 형성되면 포자가 빨리 발아하고 성장이 좋은 콜로니를 선택하여 in vitro 배양을 합니다. \x0d\포자 수집기를 사용하여 포자를 수집할 수도 있습니다. 방법은 버섯을 선별한 후 위의 과정을 거쳐 유리종을 가볍게 열고 포자수확기의 와이어 랙에 버섯의 줄기 부분이 아래로 향하게 하여 삽입한 후 페트리 접시 중앙에 놓는 것입니다. 즉시 유리 덮개를 덮고 종려나무에 거즈를 채웁니다. 그리고 거즈 위에 염화수은이나 멸균수를 조금 부어주세요. 재배를 위해 약 20°C의 인큐베이터로 옮깁니다. \x0d\② 주름에 대한 도말 방법: 무균 작업에 따라 분리할 때 성숙한 버섯을 선택해야 하며 주름 사이에 직접 접종 바늘을 삽입하고 아직 자실체에서 배출되지 않은 주름 표면의 포자를 부드럽게 닦아냅니다. 배양 후 바닥에 줄무늬를 접종합니다. \x0d\3걸이걸이 방법 : 다 자란 갓(검은버섯,털이버섯,흰버섯)에서 아가미 몇조각이나 작은 이어피스를 떼어낸 후 멸균된 스테인리스 철사(혹은 쇠사슬, 면사)로 걸어두세요 및 기타 매달아 놓은 물질) 삼각플라스크 안의 배지 윗부분이 배지나 주변 병벽에 닿지 않도록 적당한 온도\x0d\에서 배양 및 이송합니다. ④ 부착 방법: 성숙한 아가미 또는 작은 조각을 취하여 녹인 한천배지, 아카시아검, 페이스트 등과 함께 경사배지 바로 위의 시험관벽에 부착한다. 6~12시간 배양 후 즉시 포자를 제거한다. 포자를 한천 배지의 일부와 함께 새로운 배양용 시험관에 이식하면 됩니다. \x0d\포자 분리에서 얻은 모종자는 약 1년 동안 집락화될 때 추가로 정제되고 젊어져야 합니다. 균사가 사면으로 덮혀 있는 경우에는 튼튼하고 왕성하게 자라며 노화되지 않고 감염되지 않은 모종자를 선별하여 시험관에 옮겨 놓는 것이 일반적으로 5회 이상 옮겨서는 안 된다. \x0d\포자 분리를 통해 얻은 모종자는 자실체 테스트를 통과해야 하며 품종이 고품질인 경우에만 \x0d\버섯, 느타리버섯과 같은 일반 균류를 생산할 수 있습니다. 봉황버섯, 표고버섯, 표고버섯, 밀짚버섯 모두 다포자 분리로 얻을 수 있습니다.\x0d\ 흰목이버섯 포자의 분리는 아래에 간략하게 설명되어 있습니다. \x0d\무균 절차에 따라 귀를 채취한 후, 12시간 배양 후. 귀가 달린 삼각플라스크에서는 병 바닥의 배양액 표면에 "포자무늬"가 나타납니다. 귀를 꺼내어 20℃~25℃ 인큐베이터에 넣어 배양합니다. 2~3일 동안 유백색의 투명하고 반죽 같은 작은 집락이 배양 배지 표면에 나타날 것입니다. 이는 Tremella fuciformis의 효모 같은 분생포자에 의해 형성된 소량의 Tremella 곰팡이 균사입니다.
이때, 시험관의 사면배지에 옮긴다. 사면배지가 가득 찬 후 영양분이 풍부하고 표면이 비교적 건조한 배지에 옮긴다. 약 30일 후, 콜로니는 흰색의 균사체로 성장하였다. \x0d\Tremella fuciformis의 효모 같은 분생포자와 균사는 깃털 모양의 균사체 자낭균(재균사체)과 혼합될 때만 Tremella fuciformis 포자에 유익할 수 있으며, 후자는 목재 및 기타 섬유질 물질을 분해하고 영양분을 제공하는 데 도움이 됩니다. 발아, 균사 집락화 및 자실체 형성. \x0d\두 종류의 균사가 만나면 먼저 순수 균사 두 종류를 선택합니다. \x0d\깃털 모양의 균사를 정화하고 번식시키려면 일반적으로 성장이 빠르고 벽 오르기 능력이 강한 시험관 사면이나 종자병을 선택합니다. 팁 균사를 채취하여 튜브에 옮겨 25°C~28°C에서 배양합니다. 전송을 반복하면 몇 개의 튜브 후에 우수한 순종을 얻을 수 있습니다. \x0d\목이버섯 균사의 특징은 균사의 성장이 느리고 담자포자의 발아가 쉽지 않다는 점입니다. 두 균을 혼합할 때에는 먼저 8~10일 동안 배양한 흰목이버섯 균사체의 사면을 취하고, 하기 방법에 따라 흰목이버섯 균사체로부터 약 0.5cm 떨어진 경사면에 작은 깃털 균사체 조각을 삽입한다. 무균 수술 방법. 25°C에서 1주일 동안 배양하여 혼합된 흰목이 종자를 얻습니다. \x0d\2. 조직분리배양법 \x0d\ 자실체의 내부조직을 이용하여 무성생식을 하여 모종자를 얻는 간단한 방법, 즉 조직분리이다. 이 방법은 조작이 간편하고, 균사체의 생장 및 발달이 빠르며, 다양성 특성의 보존이 용이하며, 특히 교배 후에는 우수한 균주의 조직분리 방법으로 유전적 특성을 안정화시킬 수 있다. 다음과 같은 분리 방법이 자주 사용됩니다. \x0d\ (l) 자실체 분리: 버섯을 재배하려면 꽃이 크고, 갓이 두껍고, 줄기가 짧으며, 성숙 기간이 89분인 고품질 품종을 선택하십시오. 버섯의 밑동 2개를 잘라 멸균박스에 담아 0.1% 염화수은수에 몇 분간 담가둔 후 멸균수로 헹구고 말리거나 뚜껑을 닦고 알코올 75% 면봉으로 2회 찔러준다. 표면 소독. 접종할 때 버섯을 찢어서 뚜껑과 자루 또는 아가미의 접합부에서 작은 조직 조각을 골라 PDA 배양 배지로 옮깁니다. 약 25°C의 온도에서 3~5일간 배양한 후, 조직에 흰색의 솜털 같은 균사가 관찰되며, 튜브를 옮겨 팽창시켜 균주를 얻는다. 표고버섯, 느타리버섯 등에도 이 방법을 사용할 수 있다. \x0d\ (2) 경화증의 분리: 포리아 코코스, 폴리포러스 폴리포루스, 썬더필 및 기타 곰팡이의 자실체는 수집하기 어렵습니다. 가장 흔한 것은 영양분을 저장하는 경화증입니다. 박테리아는 경화증을 분리하여 얻을 수도 있습니다. 방법은 경화증의 표면을 깨끗이 세척한 후 알코올이나 염화수은으로 소독한 후, 경화증을 잘라 콩알 크기 정도의 중간조직을 작은 조각으로 채취하여 PDA 배양배지 경사면에 접종하고, 그리고 그것을 배양합니다. 경화증은 대부분이 다당류이고 소량의 균사만 함유하고 있는 저장 기관이므로 채취할 조직 조각이 더 커야 하며, 조직 조각이 너무 작으면 분리하기가 어렵습니다. 박테리아 종. \x0d\ (3) 마이코신 분리 : 일부 자실체는 찾기 어렵고 경화증이 없어 마이코신으로 분리할 수 있다. 아르밀라리아, 유사 아르밀라리아 등. 수술방법은 균 표면의 검은 피질을 알코올이나 염화수은으로 2~3회 가볍게 닦아낸 후 검은 외층(균의 껍질)을 제거하고 고과를 작게 잘라서 추출하는 것이다. 멸균 가위로 절편을 배양 배지에 접종하고 배양하여 박테리아 균주를 얻습니다. \x0d\박테리오신 분리에 주의해야 합니다. 박테린도 상대적으로 작고 이소린도 상대적으로 작기 때문에 분리 시 잡균을 오염시키기 쉽기 때문에 엄격한 작업이 필요합니다. \x0d\3． 기저내 균사체 분리 및 배양방법\x0d\식용균의 생육을 위한 기질을 분리물질로 사용하여 순수한 균주를 얻는 방법을 기저내 균사체 분리법이라 한다. \x0d\이런 종류의 분리 방법은 특정 계절에만 나타나며 일시적이고 수집하기 어려운 자실체에 적합합니다. 기저내 분리법과 조직 분리법의 차이점은 건조된 버섯나무나 이삭의 균사가 휴면상태에 있는 경우가 많다는 점이다. 접종 후 즉시 성장이 재개되지 않는 경우도 있습니다. 따라서 균사가 생존할 수 있는지를 판단하기 위해서는 장기간(약 1개월) 동안 유지하는 것이 필요합니다. 베이스에 있는 균사체를 분리하는 방법은 목재에 있는 균사체를 분리하는 방법(즉, 버섯나무나 이삭나무의 분리방법)과 토양에 있는 균사체를 분리하는 방법으로 나눌 수 있다. \x0d\ (1) 목재의 균사체 분리 방법: 버섯목이나 이삭을 분리하는 방법으로, 잡균의 감염을 줄이기 위해 버섯(이삭)목을 멸균한 후 분리해야 합니다. 버섯(이삭)수 표면을 알코올램프 불꽃으로 살짝 태워서 곰팡이 포자를 태워 없애거나, 0.1% 염화수은수에 포자를 몇 분간 담가둔 후 멸균수로 헹구어 흡수시켜도 됩니다. 멸균 여과지로 건조시킵니다. 접종 블록을 절단할 때는 주의해야 합니다. 접종원 블록은 진균 균사의 분포 범위 내에서 절단되어야 합니다. 따라서 느리게 자라는 균사체를 가진 종은 얕게 수확해야 하며, 빠르게 자라는 균사체를 가진 종은 깊게 수확할 수 있습니다. 동시에.
균사체 분포 범위도 버섯의 종류, 나무의 질감, 버섯(이삭)의 나무 두께, 발육 시기 등에 따라 결정되어야 합니다. 그런 다음 날카로운 칼을 사용하여 자릅니다. 접종 블록은 잡균에 의한 감염 가능성을 줄이고 균주의 순도를 향상시키기 위해 가능한 한 작아야 합니다. 접종블록을 배양배지로 옮긴 후, 균사체 성장에 적합한 22°C~26°C의 온실이나 배양기에 넣어 균사체가 다시 성장할 수 있도록 해야 합니다. \x0d\ (2) 토양 내 균사체 분리: 많은 종류의 식용 곰팡이가 있으며, 그 중 다수는 토양에 자생하며 포자는 발아하기 쉽지 않습니다. 조직 분리도 성공하기 쉽지 않습니다. 토양에서 균사체를 분리하여 순수한 종을 얻는 방법을 토양에서 균사체 분리라고 합니다. \x0d\ 토양에서 균사체를 분리할 때에는 주의가 필요합니다. 토양 속 균사체 주변에는 다양한 토양미생물이 서식하고 있으므로 분리 시에는 이들 미생물의 간섭을 최대한 피하고 균사체를 일괄적으로 세척하는 것이 필요합니다. 균사체 끝부분에 잔해물이 없도록 접종하고 멸균수로 반복해서 헹구고 배양배지에 40μg/L 스트렙토마이신이나 클로르테트라사이클린 등 세균 증식을 억제하는 약물을 첨가합니다. 세균 감염이 발견되면 군집 가장자리의 균사를 골라 톱밥 배양 배지에 접종할 수 있습니다. 박테리아는 리그닌을 분해하는 능력이 없기 때문에 톱밥 배양 배지에서 쉽게 증식할 수 없으며 접종 장소에 국한됩니다. 균사가 감염된 부위에서 자란 후에는 확장되고 정제될 수 있습니다. \x0d\ (3) 자실체 베이스 분리: 병재배, 자루재배 또는 대형 베드 재배의 자실체 베이스에서 새로운 균사를 분리하는 방법을 자실체 베이스 분리라고 합니다. 예: \x0d \이삭이 일찍 출현하고, 이삭 출현율이 높으며, 해충 및 질병이 없는 재배실에서 활력이 가장 강한 어린 이삭 5봉지를 선택하여 기후가 온화하고 빛이 산란되는 현장으로 옮깁니다. 나중에 재배하여 균사체의 활력을 향상시킵니다. 배양 7~10일 후 자실체의 직경이 4~5cm에 달하면 분리를 위한 모체로 회수할 수 있다. 그런 다음 가장 이상적인 것을 선택하고 날카로운 칼로 흰 곰팡이 자실체를 잘라낸 다음 0 ° C 냉장고 또는 디클로보스가 담긴 용기에 밤새 넣어 병 속의 해충을 죽입니다. 그런 다음 75% 알코올 또는 염화수은을 사용하여 귀 베이스와 백 외부의 불순물을 닦아낸 후 접종 도구, 접종 배지 등과 함께 멸균실로 옮깁니다. 멸균 후 접종칼을 이용하여 봉지 입구 윗부분의 오래된 균근을 두께 약 15mm 정도 파내어 배양한다. 봉지 입구에 흰 균사가 노출되면 접종바늘을 사용하여 쌀알 반알만큼 큰 흰 세균 응축물을 떼어내고 재빠르게 모시험관 배양액 중앙으로 천천히 옮겨준다. 접종 바늘을 제거하고 면 마개로 꽂습니다. 더 많은 어미 종자를 얻기 위해서는 100-200개의 시험관의 접종량을 선택하여 사용해야 합니다. 분리 후에는 즉시 22°C~24°C 배양기 또는 온실로 옮겨 배양해야 합니다. 배양액에 수분이 더 많기 때문에 귀재 분리보다 균사가 더 빨리 회복됩니다. 2~3일이 지나면 분리된 균의 가장자리에 흰색 균사가 보입니다. 정화를 위해 하루에 두 번 이상 관찰하십시오. 관찰 및 정제 방법은 이어우드 분리와 동일하다. 적정 온도에서 10~15일간 배양한 후, 접종한 블록의 꼬임 부분에 빨간색과 노란색의 물방울이 나타나면 원래의 종자가 팽창할 수 있다. \x0d\\x0d\ (2) 원종과 재배종의 접종 및 배양 \x0d\\x0d\모종을 얻은 후 균주 생산의 요구를 충족시키기 위해. 우수하고 순도가 높은 모종을 선택하여 더욱 독창적인 종자로 확장시켜야 합니다. \x0d\원래 배양 배지는 일반적으로 목화씨 껍질, 톱밥, 잔디 및 기타 배양 배지를 사용합니다. \x0d\병에 담긴 원래 배양 배지를 멸균한 후 멸균된 접종 상자에 보낼 수 있습니다. 병에 있는 배양 배지가 30°C 이하로 냉각되면 무균 작업 절차에 따라 접종을 수행할 수 있습니다. \x0d\균주병(봉지)을 배양실에 넣을 때에는 자주 점검해야 하며, 잡균에 오염된 것이 발견되면 즉시 꺼내십시오. 배양원본종은 균사체가 강하고, 병벽에 밀착하여 수축되지 않고, 색상이 순수하며, 일정한 향이 있고, 생명력이 강하며, 재배종으로 확대되었을 때 빨리 섭취되어야 한다. \x0d\재배는 원종을 더욱 확대하여 3차 종으로 재배하는 것을 원종의 접종 및 재배와 동일하다. 일반적으로 표고버섯, 느타리버섯, 표고버섯, 노루궁뎅이버섯, 흰버섯류 등의 재배종은 대부분 제재목과 목화껍질을 배지로 사용하고 있다. 버섯은 종종 똥풀을 배양재료로 사용합니다. \x0d\재배 종은 재료 블록이 탈수되거나 수축되지 않아야 합니다. 균사체는 튼튼하고 색이 순수하며 향이 신선하고 노화 현상이 없으며 세균 오염이 없습니다. 일부 종은 식재 재료에 삽입된 후 소량의 원기를 가질 수 있습니다. , 잘 자라며 활력이 강합니다. \x0d\원래 종자에 재배 종자를 접종할 때에는 원 종자병 입구의 균사층을 파내고 사용하지 않아야 합니다.
\x0d\\x0d\ (3) 액체 균주의 단순 재배\x0d\\x0d\ 현재 액체 침지 발효법을 사용하여 세균 균주를 생산하며 생산량이 많고 주기가 짧으며 세균 숙성이 깔끔한 특징을 가지고 있습니다. , 저비용, 편리한 접종이 식용균의 공장생산을 실현하는 목표입니다. 참고로 액상종자 재배과정을 간략히 설명하면 다음과 같다. \x0d\간단히 말하면 순수하고 우수한 균주를 액체배지(고체배지는 응고제를 첨가하지 않음)에 투입하여 균사가 증식하여 다수의 작은 세균구를 형성한 후 배양액을 가죽에 톱밥이나 목화씨를 섞어서 박테리아 블록을 만들고 배양하여 자실체를 형성합니다. 원래 종자와 재배 종자를 준비하는 데에도 사용할 수 있습니다. \x0d\액체 균주를 배양하려면 배양액을 삼각 플라스크에 넣을 수 있으며, 이는 빈 플라스크 무게의 약 5분의 1에 해당합니다. 플라스크 셰이커(셰이커라고도 함)를 사용하여 배양합니다. 병 흔드는 기계에는 회전식과 왕복식의 두 가지 유형이 일반적으로 사용됩니다. 액체배지는 감자즙(설탕첨가), 맥아즙, 옥수수가루, 콩가루, 설탕, 무기염 등을 사용하여 제조할 수 있다. 배양배지는 혼합이 가능하며 다양한 식용 및 약용균의 배양에 적합하여 좋은 결과를 얻을 수 있습니다. 원재료명 : 콩가루 2%, 옥수수가루 1%, 포도당 3%, 이스트분말 0.5%, 인산이수소칼륨 0.1%, 탄산칼슘 0.2%, 천연 pH, 12°C에서 30분 동안 멸균. 그런 다음 접종하고 배양합니다. \x0d\생산량이 많으면 삼각 플라스크를 기준으로 종자 탱크를 단계적으로 확장하고 발효 탱크에서 액체 심폭기 발효를 진행하여 많은 수의 균주를 생산합니다. 그러나 생산에는 많은 장비가 필요하고 고도의 기술이 필요하기 때문에 식용균 재배를 현대화할 수 있는 여건도 조성해야 합니다. \x0d\\x0d\ (4) 균주 품질 식별 \x0d\\x0d\균주 품질을 식별하는 가장 좋은 방법은 버섯 테스트를 수행하는 것입니다. 하지만 시간이 더 오래 걸립니다. 균주를 구매하거나 균주 생산 시 어떻게 균사체의 생육상태를 파악하고 균주의 품질을 신속하게 판단할 수 있습니까? 몇 가지 방법을 소개합니다: \x0d\1. 육안 관찰: 우수한 균주의 균사는 두껍고 흰색이며, 벨벳 같고, 두껍고 조밀하며, 깔끔하고 빠르게 자라며 강한 향기가 있습니다. \x0d\2. 우수한 박테리아 균주의 기준은 "순수하고, 향기로우며, 직립하고, 강하고 촉촉하다"로 요약할 수 있습니다. 검사시에는 병마개를 열고, 균주병 중앙에 있는 균사체를 작은 조각으로 꺼내어 색을 관찰하고 냄새를 맡은 후, 재료조각을 손으로 집어서 수분함량을 확인한다. 위의 요구 사항을 충족합니다. \x0d\3. 현미경 검사: 소량의 균사를 골라 현미경 위에 놓고 형태, 균사 가지, 분리, 자물쇠 모양 결합 및 세포막 두께를 관찰합니다. 배양관찰 : 균주병에서 균사체 작은 조각을 골라 경사진 시험관배지에 접종하고 23~25°C의 일정한 온도에서 배양하여 5주 후 균주생존율을 확인한다. 균사체의 성장이 빠르고, 왕성하고 균일하며, 튼튼하고 굵고, 길고 깔끔하다면, 그 균주의 생명력이 강하다는 것을 의미합니다. \x0d\4.블록 방법: 테이블 위에 흰 종이를 놓고 병에서 같은 나이의 큰 박테리아 조각을 꺼내 손으로 2조각으로 나눈 다음 2조각을 4조각으로 나눕니다. 4개 조각을 8개 조각으로 나누어 순서대로 진행하세요. 우수한 균주는 전체 조각이 많고 잔해가 적습니다. 열등한 박테리아는 전체 조각이 적고 잔해가 더 많습니다. \x0d\5.액체 균주 식별: 플라스크 또는 발효 탱크를 3~7일 동안 배양할 때 액체 표면에 거품이 나타나 "지성 피부", 혼탁 및 기타 현상이 발생하는 경우 이는 균주 자체를 의미합니다. 다양한 박테리아를 함유하고 있습니다. 박테리아 덩어리가 부유하거나 균사의 얇은 층이 성장하는 속도가 느리면 박테리아 균주의 생존력이 약함을 나타냅니다. 흰 반점 주변의 균사는 빠르게 자라며 흰색이 두껍고 솜 모양으로 되어 있어 세균의 생명력이 강하다는 것을 알 수 있습니다. \x0d\\x0d\ (5) 균주 생산 과정에서의 잡균 예방 및 방제 \x0d\\x0d\ 균주 생산 시 잡균에 의한 오염이 일단 발생하면 이를 방지하기 위해 항상 주의해야 한다. 치료하기가 쉽지 않습니다. 따라서 전체 종자생산과정은 멸균상태에서 이루어져야 한다. 접종 상자와 모든 분리 및 접종 도구 및 도구는 엄격하게 소독 및 멸균되어야 합니다. 직원들은 소독제로 손을 씻고, 멸균된 작업복과 모자, 마스크를 착용해야 하며, 빠르고 정확하게 움직여야 하며, 공기 중 잡균에 의한 감염을 예방하기 위해 말을 하거나 돌아다니지 않도록 노력해야 합니다. \x0d\모종을 분리할 때에는 초기 자실력이 있고 생존력이 강한 버섯을 선택하십시오. 첫 번째 플러시 버섯은 생존력이 강하고 접종 후 외부 박테리아의 침입 가능성 없이 빠르게 자리를 차지할 수 있기 때문에 핵심입니다. \x0d\오염된 균주는 일반적으로 불완전한 멸균, 접종 중 느슨한 무균 작업 또는 부적절한 병 뚜껑 등 다양한 요인에 의해 발생합니다. 따라서 접종 전 배양액을 25°C 정도의 배양기에 넣어 2일 후에도 균이 자라지 않으면 철저한 무균 상태로 사용하는 것이 가장 좋습니다. 접종 과정 중에 작업을 수행해야 합니다.
\x0d\잡균이 오염되는 또 다른 이유는 모종을 분리할 때 잡균이 감염되는 것일 수 있습니다. 버섯의 표면이 세균으로 오염되어 소독이 완전하지 않기 때문에 세균은 다음을 통해 배양배지로 유입됩니다. 조직 블록. \x0d\간단히 말하면, 오염될 가능성이 많습니다. 환경 소독에 주의하고, 무균 작업 절차에 따라 철저하게 살균하고, 모든 단계를 확인하고, 분리된 박테리아의 품질에 세심한 주의를 기울이십시오.